Цели генетического мониторинга. Задачи
генетического мониторинга. Подходы к генетическому мониторингу.
Действие физических факторов на наследственный
аппарат клетки. Классификация мутагенных факторов. УФ-излучение, ЭМ-излучение,
СВЧ-излучение, КВЧ-излучение, УВЧ-излучение, ИК-излучение, оптическое
излучение.
Нитроароматические компоненты,
полиароматические гидрокарбонаты, полициклические ароматические амины,
нитрозамины, тяжелые металлы, пестициды. Действие металлов на наследственный
аппарат клетки.
Анализ мутаций на генном уровне,
цитогенетический анализ тканей растений, флуоресцентная in situ гибридизация,
анафазный метод и микроядерный тест, алкалиновый метод комет, определение
флуктуирующей асимметрии растений.
Выявление структурных и количественных
аберраций хромосом, метод флуоресцентной гибридизации in situ, микроядерный
тест.
Комета-тест, гель-электрофорезный тест,
обнаружение аддуктов ДНК.
Salmonella typhimurium (тест Эймса),
Saccharomyces cerevisae (альфа-тест).
Особенности растительных организмов,
позволяющие их использовать в качестве тест-систем. Наиболее часто используемые
в скрининге мутагенов растительные тест-системы. Оценка качества окружающей
среды с помощью традесканции (мутации в клетках тычиночных нитей, микроядерный
тест). Дрозофила – объект для исследования мутагенности токсикантов (метод
Меллер-5).
Понятие об экологической генетике. Основные
направления генетического мониторинга природных популяций. Хлорелла – объект
для проведения исследований динамики мутационного процесса в популяциях.
Закономерности мутационного процесса в радиоактивно облучаемых популяциях.
Реакция популяции на стресс.
Методы изучения генетической структуры
популяций. Исследование мутационного процесса в половых клетках человека и
снижение генетического груза популяции.
Оценка миграционных потоков аллелей. Оценка
мутагенеза в соматических клетках человека.
Общий статус трансгенных культур в мире.
Риски, связанные с интродукцией трансгенных растений в окружающую среду.
Основные методы генетического мониторинга трансгенов.
Цели генетического мониторинга. Задачи генетического мониторинга. Подходы к генетическому мониторингу.
Классификация мутагенных факторов. Физические факторы:
УФ-излучение, ЭМ-излучение, СВЧ-излучение, КВЧ-излучение, УВЧ-излучение,
ИК-излучение, оптическое излучение. Химические факторы: нитроароматические
компоненты, полиароматические гидрокарбонаты, полициклические ароматические
амины, нитрозамины, тяжелые металлы, пестициды. Действие металлов на
наследственный аппарат клетки.
Тесты на растениях: анализ мутаций на генном уровне,
цитогенетический анализ тканей растений, флуоресцентная in situ гибридизация,
анафазный метод и микроядерный тест, алкалиновый метод комет, определение
флуктуирующей асимметрии растений. Тесты на животных: выявление структурных и
количественных аберраций хромосом, метод флуоресцентной гибридизации in situ,
микроядерный тест, комета-тест, гель-электрофорезный тест, обнаружение аддуктов
ДНК.
Микроорганизмы в качестве тест-систем: Salmonella
typhimurium (тест Эймса), Saccharomyces cerevisae (альфа-тест). Растения в
качестве тест-систем: особенности растительных организмов, позволяющие их
использовать в качестве тест-систем; наиболее часто используемые в скрининге
мутагенов растительные тест-системы; оценка качества окружающей среды с помощью
традесканции (мутации в клетках тычиночных нитей, микроядерный тест). Животные
в качестве тест-систем: дрозофила – объект для исследования мутагенности
токсикантов (метод Меллер-5).
Понятие об экологической генетике. Основные
направления генетического мониторинга природных популяций. Хлорелла – объект
для проведения исследований динамики мутационного процесса в популяциях.
Закономерности мутационного процесса в радиоактивно облучаемых популяциях.
Реакция популяции на стресс.
Приготовление стоковых растворов мутагенов (бромистый этидий 50 мкг/мл; фурациллин 50 мкг/мл). Приготовление растворов мутагенов с меньшей концентрацией путем разведения стоковых растворов (бромистый этидий: 10 мкг/мл; 0,5 мкг/мл); (фурациллин: 20 мкг/мл; 5 мкг/мл; 1 мкг/мл). Стерилизация растворов мутагенов путем пропускания через бактериальные фильтры.
Посев индикаторных штаммов S. typhimurium (ТА100;
ТА98) на LB-среду с последующей инкубацией при 37°С в течение суток.
Приготовление суспензий клеток S. typhimurium (ТА100;
ТА98) в физиологическом растворе. Приготовление фракции S9.
Внесение исследуемых растворов мутагенов, микросомной активированной смеси, фракции S9 и суспензий индикаторных бактерий в полужидкий агар. Посев индикаторных штаммов, путем разливания полученной их смеси с мутагенами и микросомной активированной смесью, содержащей фракцию S9, на плотную среду.
Подсчет колоний ревертантов His+. Заполнение рабочих
таблиц.
Посев двух родительских штаммов S. cerevisae в жидкую
среду с последующей инкубацией при 30°С в течение суток.
Приготовление суспензий
клеток S. cerevisae в физиологическом растворе. Высев суспензий клеток обоих штаммов S. cerevisae на плотную
среду. Нанесение на среду в центре чашки диска фильтровальной бумаги с
раствором испытуемого мутагена. Инкубация чашек при 30°С в течение суток.
Перепечатывание полученных колоний на селективную
среду с последующей инкубацией при 30°С в течение 2-3 суток.
Учет результатов. Оформление протокола в рабочей
тетради.
Методы изучения генетической структуры популяций.
Исследование мутационного процесса в половых клетках человека и снижение
генетического груза популяции. Оценка миграционных потоков аллелей. Оценка
мутагенеза в соматических клетках человека.
Общий статус трансгенных культур в мире. Риски,
связанные с интродукцией трансгенных растений в окружающую среду. Основные
методы генетического мониторинга трансгенов.
Пробоподготовка и первый этап выделения ДНК:
гомогенизация ломтиков сырого картофеля или вымоченных в дистиллированной воде
семян кукурузы (сои) в фарфоровых ступках с лизирующим буфером при помощи
пестика; инкубация суспензий в микропробирках при 65°С в течение 15 мин;
фенольно-хлороформная депротеинизация; осаждение ДНК 96%-ным этиловым спиртом.
Второй этап выделения ДНК:
переосаждение ДНК 70%-ным этиловым спиртом; лиофилизация ДНК с последующим
растворением в ТЕ-буфере.
Подготовка реакционной смеси, настройка термоциклера и
проведение амплификации.
Приготовление агарозного геля. Учет результатов ПЦР
методом горизонтального электрофореза.