Впервые простагландин был выделен в 1935 году шведским физиологом Ульфом фон Эйлером из семенной жидкости, поэтому термин «простагландин» происходит от латинского названия предстательной железы (лат. glandula prostatica). Позже оказалось, что простагландины синтезируются во многих тканях и органах. В 1971 году Джон Вейн обнаружил, что аспирин является ингибитором синтеза простагландинов. За исследование простагландинов он и шведские биохимики Суне Бергстрём и Бенгт Самуэльсон получили в 1982 Нобелевскую премию по физиологии и медицине.
Простагландины находятся практически во всех тканях и органах. Они являются аутокринными и паракринными липидными медиаторами, которые воздействуют на тромбоциты, эндотелий, матку, тучные клетки и другие клетки и органы. Простагландины синтезируются из незаменимых жирных кислот (НЖК).
Жирная кислота | Тип НЖК | Тип |
Гамма-линоленовая кислота (GLA) через ДГЛК | ω-6 | Тип 1 |
Арахидоновая кислота (AA) | ω-6 | Тип 2 |
Эйкозапентаеновая кислота (ЭПК) | ω-3 | Тип 3 |
Промежуточный продукт образуется под действием фосфолипазы A2, который затем преобразуется либо по циклооксигеназному, либо по липоксигеназному пути. Циклооксигеназный путь синтезирует тромбоксаны, простациклин и простагландины D, E и F. Липоксигеназный путь синтеза, который активен в лейкоцитах и макрофагах, образует лейкотриены.
Ранее считалось, что после синтеза простагландины выходят из клетки за счёт пассивной диффузии, так как они обладают значительной липофильностью. Однако, позже был обнаружен белок-переносчик простагландина (PGT, SLCO2A1), который опосредует клеточный захват простагландинов. Секреция же осуществляется другими белками: multidrug resistance protein 4 (MRP4, ABCC4) из семейства ATP-binding cassette transporter и, возможно, другими переносчиками, которые пока неизвестны.
Синтез простагландинов осуществляется в два этапа: окисление под действием циклоксигеназы и конечной простагландинсинтазы. Существует два типа циклооксигеназ: ЦОГ-1 и ЦОГ-2. Считается, что ЦОГ-1 определяет базальный уровень простагландинов, а ЦОГ-2 запускает синтез простагландинов при стимуляции (например, при воспалении).
Простагландин E2 (ПГE2) образуется простагландин E-синтазой из простагландина H2 (ПГH2). Обнаружено несколько простагландин E-синтаз. Считается, что микросомальная простагландин E-синтаза-1 является ключевой формой фермента, синтезирующего ПГE2.
Сравнение различных типов простагландинов простациклина, простагландина E2 (динопростон) и простагландина F2α.
Тип | Рецептор | Функция |
---|---|---|
Простациклин | IP |
|
Простагландин E2 | EP1 |
|
EP2 |
| |
EP3 |
| |
неспец |
| |
Простагландин F2α | FP |
|
Full name | shortened name | activating prostanoids | classification[5] | G protein linkage[2] | pathways[2] |
---|---|---|---|---|---|
Prostaglandin DP1 receptor | DP1 | PGD2>>PGE2>PGF2α>PGI2=TXA2[6] | relaxant | Gs alpha subunit | activates AC, increases cAMP, raises Ca2+ |
Prostaglandin DP2 receptor | DP2 | PGD2>>PGF2α=PGE2>PGI2=TXA2[7] | ? | Gi alpha subunit | inhibits AC to depress cAMP levels |
Prostaglandin EP1 receptor | EP1 | PGE2>PGF2α=PGI2>PGD2=TXA2[8] | contractile | Gq alpha subunit | stimulates PLC, IP3, PKC, ERK, p38 Mpk, and CREB |
Prostaglandin EP2 receptor | EP2 | PGE2>PGF2α=PGI2>PGD2=TXA2[9] | relaxant | Gi alpha subunit | stimulates AC, raises cAMP, stimulates beta catenin and Glycogen synthase kinase 3 |
Prostaglandin EP3 receptor | EP3 | PGE2>PGF2α,PGI2>PGD2=TXA2[10] | inhibitory | Gi & G12 subunit | inhibits AC, decreases cAMP, stimulates PLC & IP3, raises Ca2+ |
Prostaglandin EP4 receptor | EP4 | PGE2>PGF2α=PGI2>PGD2=TXA2[11] | relaxant | Gs alpha subunit | stimulates AC, PKA, PI3K, AKT, ERK, p38 Mpk, & CREB; raises cAMP |
Prostaglandin F2α receptor | FP | PGF2α>PGD2>PGE2>PGI2=TXA2[12] | contractile | Gq alpha subunit | stimulates PLC, IP3, & PKC; raises Ca2+ |
Prostacyclin I2 receptor | IP | PGI2>>PGD2=PGE2=PGF2α>TXA2[13] | relaxant | Gs alpha subunit | stimulates AC & PKA; raises cAMP |
Thromboxane A2 receptor | TP | TXA=PGH2>>PGD2=PGE2=PGF2α=PGI2[14] | contractile | Gq alpha subunit | stimulates PLC & IP3; raises Ca2+ |
Синие стрелки: активация мишени или стимуляция синтеза вещества; красные линии: ингибирование мишени (пунктирная линия указывает на вероятное тормозящее действие); пунктирная черная стрелка: расщепление вещества. Чтобы избежать путаницы, подтип (ы) простаноидных рецепторов не показаны. Также не показаны незначительные внешние K + токи в случае TRPV1, TRPM8, TRPA1, HCN2 и SAAC каналов. VGCC, потенциалзависимыми Са2 + каналы; ТТХ-R, тетродотоксин-устойчивые Na + каналы (NAV1 8, 9 NAV1..); HCN2, гиперполяризации активированный циклических нуклеотидов закрытого канала; SACC, стретч-активированный катионом канал; CAKC, кальций-активируемых K + каналов; TREK, механочувствительных K + канал; VGKC, K + каналы напряжения закрытого; ER, эндоплазматической сети; IP3R, IP3-рецептор. Для других сокращений см текст. AKAP показан только тогда, когда его участие было выявлено непосредственно
Prostanoid | Sensitized Response | Receptor Type | Signaling Mechanism | Membrane Target | Reference Nos. |
---|---|---|---|---|---|
Heat sensitization | |||||
PGE2, PGI2, PGE1, PGF2α | Heat response in the rat spinal cord-tail preparation in vitro | 616 | |||
PGE2, PGI2 | Heat-induced spike discharge in dog testicular and rat cutaneous nociceptors in vitro | EP2(dog) | cAMP (dog) | 146, 389,391, 496,499 | |
PGE2, PGE2-G | Heat-induced hindpaw withdrawal in rats | PKA-AKAP | 176, 295,318, 644 | ||
8-iso PGE2 | |||||
PGE2 PGI2 | Heat-induced hindpaw withdrawal in mice | EP1 IP | PKA-AKAP | TRPV1 Nav1.9 Nav1.8 | 22, 202,323, 347,463, 511,643, 787 |
PGE2 | Prolongation of heat hyperalgesia | EP4 | cAMP–Epac–Rap1-PKCε; ERK | 171 | |
PGE2 | Heat-induced tail withdrawal in the monkey | 531 | |||
PGE2 | Heat threshold in human skin (1°C decrease) | 618 | |||
PGE2 | Heat-induced TRPV1 activation in HEK cells and mouse DRG neurons | EP1 EP4 | PKC-AKAP PKA-AKAP | TRPV1 | 511, 643 |
PGI2 | IP IP | PKC PKA | |||
PGE2 | Reduction of cooling-induced Ca2+ transients in rat DRG neurons | cAMP-PKA | TRPM8 | 435 | |
PGE2 | Heat-induced CGRP release from isolated mouse sciatic axons | cAMP-PKA | TRPV1 | 200 | |
Mechanical sensitization | |||||
PGE1 | Mechanically-induced vocalization in the rat | 593 | |||
PGE2, PGI2PGE2-G, 8-iso PGE2, 8-iso GF2α | Mechanically-induced hindpaw withdrawal in the rat (Randall-Selitto test) | Gs–cAMP–PKA–5-LOX | Nav1.8 | 14, 15, 176, 295, 351, 355, 423, 553, 694, 695, 697–700 | |
NO | |||||
PGE2 | The above response in carrageenan-induced primed state in the rat skin | PKCε; ERK | 16, 154,325, 558,559 | ||
PGE2 | The above response in carrageenan- or vibration-induced primed state in rat skeletal muscle | PKCε | 151, 153 | ||
PGE2, PGI2 | Mechanically-induced hindpaw withdrawal in the rat (modified Randall-Selitto test) | cAMP-PKA-PDE4 | 124, 193, 194, 202, 278, 623, 751 | ||
PKCε | |||||
PGE2(repeated) | Mechanically-induced hindpaw withdrawal in the rat (modified Randall-Selitto test): persistent hyperalgesia | PKA | Nav1.8 | 190, 748–750 | |
PKCε | |||||
PGE2 | Mechanically-induced hindpaw withdrawal in the mouse | EP3 | cAMP-PKA PKC(ε) ERK,ERKCXCR2 receptor | Nav1.9 | 22, 336,464, 748 |
PGE2 | Mechanically-induced spike discharge in rat cutaneous nociceptors | Gs-cAMP-PKA NO | 1, 101,760, 773100 | ||
PGE2and/or PGI2 | Mechanically-induced spike discharge in cat (knee joint) or rat (ankle, knee, tarsal joint) articular or meningeal nociceptors or pulmonary C-fibers, in canine testicular nociceptors in vitro | cAMP (dog) | 53, 54,247, 287,370, 564,636, 638,796 | ||
PGE2 | Hyposmotic stimulation-induced spike discharge in rat cutaneous C-fibers | TRPV4 | 10 | ||
PGE2 | Hyperosmotic or hyposmotic stimulation-induced nocifensive reaction in the rat or mouse | TRPV4 TREK-1 | 9, 10, 18 | ||
Chemical sensitization | |||||
PGE2, PGE1 | Bradykinin-induced pain in human skin and veins, low pH-induced pain in human skin and muscle | 195, 366,618 | |||
PGE1 | Bradykinin, histamine or serotonin-induced spike discharge and reflex hypotension in the isolated perfused rabbit ear | 326 | |||
PGE2 | Bradykinin, capsaicin or phenyl-biguanide-induced cardiorespiratory reflex in dogs or rats | 114, 409 | |||
PGE2, PGI2 | Bradykinin or acetate-induced writhing in the mouse, formalin (both phases), capsaicin, α,β-methylene-ATP or acetaldehyde-induced nocifensive reaction in rat or mouse paw | 38, 49,104, 262,634, 757 | |||
PGE2, PGI2, PGE1, PGF2α | Bradykinin or capsaicin-induced reflex response in the rat spinal cord-tail preparation in vitro | cAMP | 162, 616,786 | ||
PGE2, PGE1, PGI2 | Bradykinin-induced spike discharge in cat and rat cutaneous, cat muscle, cat knee joint, rat ankle joint, cat cardiac, rat jejunal (in vitro), dog testicular (in vitro) nociceptors | EP3 (dog testis) | 54, 55,70, 96,213, 247,265, 389,390, 490,502, 636,638, | ||
TXA2analog | |||||
PGE2 | Bradykinin-induced spike discharge in rat DRG neurons K+-induced spike discharge in rat trigeminal and DRG neurons | cAMP-PKA | 34, 123,534 | ||
PGE2, PGI2 | Bradykinin-induced increase in Ca2+ in rat DRG neurons | cAMP-PKA | 663, 680 | ||
PGE2, PGD2, PGI2 | Bradykinin or kallidin-induced SP and/or CGRP release from rat DRG neurons, bovine dental pulp or rat skin (in vitro) | cAMP-PKA | L, N, P-type Ca2+channels | 29, 177,240, 280,282, 524,663, 742 | |
8-iso PGE2 | 176 | ||||
PGE2 | Capsaicin-, lactate- or adenosine-induced spike discharge in rat pulmonary C-fibers | 287 | |||
PGE2, PGI2 | Capsaicin-induced membrane current in rat DRG neurons | EP4 | cAMP–PKA AKAP | TRPV1 | 433, 441,442, 578,794 |
PGE2 | Capsaicin or phenylbiguanide induced membrane current in rat vagal sensory neurons | EP2 | TRPV1 | 401 | |
PGE2 | Anandamide-induced cobalt uptake in rat DRG neurons | TRPV1 | 658 | ||
PGE2(short) | Capsaicin- or proton-induced TRPV1 activation in HEK cells and mouse DRG neurons | EP1 | PKC | TRPV1 | 511, 643 |
PGE2(long) | EP4 | PKA-AKAP | TRPV1 | ||
PGI2(short) | IP | PKC | TRPV1 | ||
PGI2(long) | IP | PKA | TRPV1 | ||
PGE2, PGI2 | Capsaicin-induced SP and CGRP release from rat DRG neurons | EP3C EP4 | cAMP–PKA | L, N, P-type Ca2+channels | 177, 280,282, 668 |
8-iso PGE2 | 176 | ||||
PGE2, PGI2 | Capsaicin- or anandamide-induced CGRP release in rat trigeminal, capsaicin, ATP, K+-induced SP release from rat DRG neurons, proton-induced CGRP release in rat dura mater (in vitro) | EP2(trig.) | TRPV1 | 523, 563,587, 804 | |
PGE2 | Acetaldehyde-induced Ca2+ accumulation in mouse trigeminal neurons | EP1 | PLC–PKC cAMP-PKA | TRPA1 | 38 |
PGE2 | α,β-Methylene-ATP-induced mechanical and heat hyperalgesia in rats | cAMP–PKA | 759 | ||
PGE2 | ATP-induced membrane current in rat DRG neurons The same response in neurons from CFA-treated rats | EP3 | cAMP–PKA PKA + PKCε | 759 758 | |
PGE2 | Capsaicin, ATP, phenylbiguanide, histamine, SP or K+-induced increase of Ca2+ in rat vagal sensory or DRG neurons | cAMP–PKA–Ca2+entry | 248, 537,649 |
Предположительные механизмы передачи сигналов брадикинина и простагландинов в периферических окончаний ноцицептивных сенсорных нейронов, основанные на исследованиях, использующих запись одноволоконного, высвобождение нейропептидов или поведенческие тесты, отражающие активность периферических ноцицепторов. Синяя стрелка: активация мишени или стимуляции синтеза вещества; красная линия: ингибирование мишени (пунктирная линия указывает на вероятное тормозящее действие); пунктирная черная стрелка: расщепление вещества. Не показаны незначительные внешние K + токи в случае TRPV1, TRPA1 и HCN2 каналов. VGCC, потенциалзависимыми Са2 + каналы; CACC, кальций-активируемых Cl- канал; HCN2, гиперполяризации активированный циклических нуклеотидов закрытого канала; TREK, механочувствительных K + канал. AKAP показан только тогда, когда его участие было непосредственно обнаружено.