Брадикинин — пептид, расширяющий кровеносные сосуды и потому снижающий артериальное давление. Ингибиторы АПФ[1], которые используются для снижения артериального давления, повышают уровень брадикинина. Брадикинин воздействует на кровеносные сосуды, высвобождая простациклин, оксид азота(II).
Состав брадикинина: Apг-Про-Про-Гли-Фен-Сер-Про-Фен-Apг.
Брадикинин — это физиологически и фармакологически активный пептид из кининовой группы белков, состоящий из девяти аминокислот.
Считается, что брадикинин является основным фактором, обеспечивающим болевую чувствительность, являясь плазменным алгогеном.
Брадикининовый рецептор
Есть два брадикинина рецепторов: рецептор В1 и В2 рецептора.
Брадикинина рецептор В1 (В1) является G-белком рецептор, кодируемый геном BDKRB1 в организме человека. Его основной лиганд является брадикинин, который генерируется в патофизиологических условиях, таких как воспаление, травмы, ожоги, шок, и аллергии. Рецептор В1 является одним из двух G-белковых рецепторов, которые были обнаружены, которые связывают брадикинин и опосредуют ответы на эти патофизиологических условиях. В1 белок синтезируется заново после повреждения ткани он участвует вгенезе к хронических и острых воспалительных реакций (рис).
Действия системы калликреин-кининовой на эндотелиальных клетках. Плазма PK) и ткани (ТК) форма калликреин брадикинин взаимодействующей с рецептором, В2. Дальнейшее метаболизм карбоксипептидазы М (CPM) или N (CPN) генерирует B1 агонист дез-Arg9 брадикинина. Ангиотензин-превращающий фермент (АПФ) деградирует эти активные пептиды кинины. Аппаратура передачи сигналов 2 кининовых рецепторов непосредственно, а также путем повышения VEGF / VEGFR2 путь активирует Енос, и связанное с этим увеличение NO является сильным проангиогенные стимул индукции проницаемость, миграцию и пролиферацию эндотелиальных клеток. Кроме того, ТК активирует про-ММР-9, который, в свою очередь, также способствует миграции
Рецептор В2 является G-белком рецептор, соединенный с Gq и Gi. Он стимулирует фосфолипазу С, чтобы увеличить количество внутриклеточного свободного кальция и Gi ингибирует аденилатциклазу. Кроме того, рецептор стимулирует митоген-активируемой протеинкиназы пути. Он Повсеместно и экспрессирован в здоровых тканях. Рецептор В2 образует комплекс с ангиотензин превращающим ферментом (АПФ), и это, как полагают, играют определенную роль в перекрестных отношениях между ренин-ангиотензиновой системы (РАС) и кининово-калликреиновой системы (ККС). Гептапептидный ангиотензина 1-7 (A1-7) также потенцирует действие брадикинина на В2-рецепторов. Icatibant является антагонист рецепторов второго поколения В2, проходит клинические испытания как аналгетик и НПВС. FR 173657 еще один пероральный активный антагонист B2 непептидная, подвергшийся испытаниям в качестве обезболивающего и противовоспалительного препарата. Каллидин также активирует рецептор В2.
Биологические эффекты, типы рецепторов, сигнальные механизмы влияния брадикинина на ноцицепцию и гиперальгезию
Sensitized Response | Receptor Type | Signaling Mechanism | Membrane Target | Reference Nos. |
---|---|---|---|---|
Heat sensitization | ||||
Heat-induced pain in human skin | Sympathetic system | 465, 492 | ||
Heat-induced paw withdrawal in rats | B2 | COX 12-LOX | 245, 644 653 | |
Heat-induced paw withdrawal in mice | Sympathetic system | TRPV1 TRPA1 Nav1.9 | 22, 45, 110 | |
Heat-induced discharge of cat or monkey cutaneous noiceptors | 46, 350 | |||
Heat-induced discharge of rat cutaneous nociceptors in vitro | B2 | Nonneuronal COX-1 and COX-2 Sympathetic system | 258, 375, 403,431, 478, 576,630, 631 | |
Heat-induced discharge of dog testicular nociceptors in vitro | B2 | COX PKC | 392, 497 | |
Heat response in the rat spinal cord–tail preparation in vitro | COX, LOX | 616 | ||
Heat-induced CGRP release from isolated rat skin | 348 | |||
Heat-induced CGRP release from isolated mouse trachea | TRPV1 | 356 | ||
Heat-induced CGRP release from isolated mouse sciatic nerve | PKC | 200 | ||
Heat-induced current in rat DRG neurons | PKCε | 94, 95 | ||
Heat-induced TRPV1 activation in HEK cells and rat DRG neurons | PKC | TRPV1 | 685 | |
Mechanical sensitization | ||||
Mechanically-induced hindpaw withdrawal in the rat (Randall-Selitto method) | B2 | Sympathetic postganglionic fibers PLA2-COX-PGE2 NO-cGMP-PKG | P2X3/P2X2/3 | 142, 354, 423,424, 525, 674,695-697 |
The same response after CFA treatment | B2 B1 | PKA | 354 | |
Mechanically-induced hindpaw withdrawal in the rat (modified Randall-Selitto method) | B2 B2 B1 | TNF-α/IL-6/IL-1β/prostanoids TNF-α/CINC-1 (CXCL1)/sympathetic amines Leukocyte infiltration | β1adrenoceptor | 127, 189, 192,581 |
Mechanically-induced hindpaw withdrawal in the mouse | B2 | COX + sympathetic amines (TNF-α, IL-1β) | TRPA1 Nav1.9 | 22, 126, 400 |
The above response after LPS treatment | B1 | TNF-α/IL-1β/prostanoids KC (CXCL1)/prostanoids + sympathetic amines | 126 | |
Articular mechanical hyperalgesia in the rat | B2 | 132, 133 | ||
Mechanically-induced spike discharge in cat muscle afferents, cat or rat knee joint afferents, rat ankle joint nociceptors, rat cardiac vagal polymodal nociceptors, dog testicular nociceptors in vitro | 54, 247, 285,370, 487, 533,564 | |||
Mechanically-induced spike discharge in guinea pig esophagal vagal C-fibers ex vivo | TRPA1 | 791 | ||
Mechanically-induced spike discharge in mouse splanchnic colonic afferents in vitro | TRPA1 | 67, 68 | ||
Chemical sensitization | ||||
Capsaicin-induced response in the rat spinal cord–tail preparation in vitro | COX, LOX | 616 | ||
Capsaicin-induced firing of vagal tracheal C-fibers in the guinea pig | 208 | |||
Capsaicin- or low pH-induced nocifensive reaction in the mouse | 186 | |||
Capsaicin-induced Ca2+ uptake in rat DRG neurons | B2 | PLC, PKC, COX-1 (COX-2) | 85, 711 | |
Anandamide-induced cobalt uptake in rat DRG neurons | 658 | |||
Capsaicin-induced SP release from rat DRG neurons | IP3-dependent Ca2+release COX-2 | 552, 709 | ||
Incidence of capsaicin or proton responsiveness among rat DRG neurons | COX, LOX | 679 | ||
Capsaicin- or low pH-induced TRPV1 gating | 110 | |||
Capsaicin-induced current in TRPV1-transfected cells and rat DRG neurons | B2 | PKC-AKAP | TRPV1 | 436, 794 |
Low pH-induced current in DRG neurons | 386 | |||
Formalin-induced nocifensive reaction in the mouse | B2 B1 | 140 | ||
Mustard oil-induced nocifensive reaction in the rat | 762 | |||
Histamine-induced spike discharge in rat cutaneous nociceptors in vitro | 380, 381 | |||
Histamine response in the human skin | 381 | |||
Histamine or TXA2 analog-induced spike discharge in cat cardiac C-fibers | COX | 213, 214 | ||
Histamine-induced CGRP release in the guinea pig lung | COX | 645 | ||
Noradrenaline-evoked spike discharge in rat cutaneous nociceptors in vitro following CFA treatment | 40 | |||
Recruitment of noradrenaline-evoked spike discharge in rat cutaneous nociceptors | 629 | |||
Serotonin-evoked inward current in rat trigeminal neurons | PKC | 296 |
Рис. Схематическое изображение наиболее важных механизмов передачи сигнала брадикинина (БК) в ноцицептивных сенсорных нейронах. Синяя стрелка: активация мишени или стимуляция синтеза вещества; Красная линия: торможение цели; Пунктирная черная стрелка: расщепление вещества. Не показаны второстепенные внешние токи K + в случае каналов TRPV1, TRPM8 и TRPA1. Также не показаны активация ферментов MAPK и роль пути GC-NO-cGMP-PKG в тахифилаксии. VGCC, управляемые напряжением Ca2 + каналы; CACC, кальци-активированный Cl- канал; KCNQ, M-тип K + канал (Kv7); CAKC, кальций-активированный K + канал; ER, эндоплазматический ретикулум; IP3R, IP3 рецептор. Другие сокращения см. В тексте. АКАП показан только тогда, когда его участие было открыто выявлено.
http://physrev.physiology.org/content/92/4/1699
http://physrev.physiology.org/content/92/4/1699